在本應(yīng)用示例中，我們展示了如何從μ-Slide VI 0.4通道載玻片中洗脫培養(yǎng)后的貼壁細(xì)胞。該方法適用于不同規(guī)格的通道載玻片。

　　1.根據(jù)實驗說明將您的細(xì)胞培養(yǎng)到所需的匯合度?！　?/p>

　　裝有細(xì)胞和培養(yǎng)基的μ-Slide VI 0.4

　　2.從μ-Slide VI 0.4通道載玻片的通道口中取出培養(yǎng)基，不要吸干整個通道。　　

　　3.用PBS或任何其他適當(dāng)?shù)木彌_液清洗兩次，然后從另一端吸出。每個通道使用體積為100μl。我們建議同時使用細(xì)胞培養(yǎng)吸引器和移液器。如圖所示，使用吸引器的尖尖位置和移液器（如圖）。　　

　　µ-Slide VI 0.4的一個通道的橫截面顯示了PBS洗滌步驟

　　4.使用細(xì)胞培養(yǎng)吸液器從通道中吸出全部PBS，在這個步驟中，緩沖液從容器口和通道中*去除

　　5.立即用30μl分離溶液（例如胰蛋白酶/EDTA或Accutase）重新填充通道。如圖所示，將移液器吸頭直接放在通道的入口上。將30µl分離溶液填充到空通道中。

　　6.再將您的細(xì)胞放入培養(yǎng)箱中。由于生長面積和體積的縱橫比不同，分離過程可能需要比平時更長的時間（2-3分鐘）。用相差顯微鏡觀察細(xì)胞脫離。如果沒有發(fā)生分離，請增加分離溶液的濃度或使用更長的孵育時間。細(xì)胞會在幾分鐘后分離。

　　7.細(xì)胞成圓形并分離后，用100μl新鮮培養(yǎng)基或終止溶液沖洗每個通道。分離的細(xì)胞被100µl新鮮培養(yǎng)基沖出通道。

　　8.從通道的另一端取出細(xì)胞懸液。如果還剩一些細(xì)胞，請重復(fù)沖洗步驟。

　　9.收集懸浮細(xì)胞并去除或稀釋分離溶液　　

　　在細(xì)胞懸浮后，可以通過從通道中吸出溶液來收集